特价细胞之B16-F10

B16-F10细胞系是小鼠B16黑色素瘤细胞系的一个亚系，来源于小鼠自发性皮肤肿瘤。这些细胞以其侵袭性转移潜力而著称，特别是对肺部的转移，使其成为研究黑色素瘤进展和转移的重要模型。B16-F10细胞表现出高含量的黑色素，这有助于它们的着色，并被用作各种检测中追踪细胞增殖和肿瘤生长的标记。B16-F10通过Fidler的方法经过十次选择程序获得，相比其母株B16-F0及经历一次选择程序的B16-F1亚系，其转移能力得到了增强。 由于能够在同种C57BL/6小鼠中形成肿瘤，B16-F10细胞广泛应用于癌症研究，为体内研究提供了一致且可重复的模型。这些细胞表达多种与黑色素瘤相关的抗原，对于调查免疫反应和开发免疫疗法至关重要。此外，B16-F10细胞还用于评估化疗药物的有效性以及揭示黑色素瘤中药物耐受性的分子机制。该细胞系在不同实验条件下的遗传特征和行为为理解参与黑色素瘤转移途径提供了见解，有助于制定靶向治疗策略。值得注意的是，B16-F10衍生株B16-BL6表现出更强大的侵袭活性，使得B16系列成为研究黑色素瘤生物学和治疗不同方面的一套全面模型系统。 细胞培养小贴士： 当细胞开始脱落时，把它们转移到一个无菌的离心管里，然后轻轻转一转，让细胞沉淀下来。如果漂浮的细胞不多，可能看不到沉淀，但大部分细胞会粘在管壁上。 用PBS（磷酸盐缓冲液）轻轻洗1-2次，每次用3-5ml。然后加入1ml的胰酶（0.25%含有EDTA的那种），轻轻摇晃，让胰酶覆盖细胞表面，然后放回培养箱。过1-3分钟，如果细胞变圆了，轻轻拍一下瓶子，大部分细胞就会脱落。当70-80%的细胞都脱落了，就加入5ml的完全培养基（含有10%的FBS）来中和胰酶。用移液管轻轻吹打6-8次，让细胞充分分散。 将细胞悬液转移到无菌离心管中，数一数细胞的数量，然后离心收集细胞。用适量的完全培养基重悬细胞沉淀，调整细胞密度到每毫升0.6-2x10^6。将细胞悬液转移到新的培养瓶中，放回培养箱。建议T25培养瓶里加5-7ml的完全培养基，之后每2-3天换一次液。 希望这些小贴士能帮助你在实验室里更好地“照顾”这些B16-F10细胞！🔬🧫🐁